SW620/5FU 人結直腸癌細胞氟尿嘧啶耐藥株

      如果您對該產品感興趣的話,可以
      產品名稱: SW620/5FU 人結直腸癌細胞氟尿嘧啶耐藥株
      產品型號: HScell-h105(STR鑒定)
      產品展商: 合生生工
      產品文檔: 無相關文檔

      SW620/5FU 人結直腸癌細胞氟尿嘧啶耐藥株  的詳細介紹

      細胞介紹

      SW620是從一個51歲男性白人組織中分離得到。 由A.Leibovitz等從一個淋巴結建株。細胞系主要由無絨毛的小園球細胞和雙極細胞組成。它僅合成少量癌胚抗原(CEA)且在裸鼠中有高度的致瘤性。

      注:本培養基是不直接添加氟尿嘧啶藥物的。

      細胞特性

      (1)來源:結直腸腺癌,來自轉移淋巴結

      (2)形態:上皮細胞樣  貼壁生長

      (3)含量:>1×10^6  細胞數

      (4)規格:T25瓶或者1mL凍存管包裝

      (5)用途:僅供科研使用

      運輸和保存

      干冰運輸及復蘇好存活細胞

      (1)1mL凍存管包裝干冰運輸,收到后-80度冰箱保存過夜后轉入液氮或直接復蘇,若發現干冰已揮發干凈、凍存管瓶蓋脫落、破損及細胞有污染,請立即與我們聯系。

      (2)T25瓶復蘇的存活細胞常溫發貨,收到后按照細胞接收后的處理方法操作。

      細胞接收后的處理

      1)收到細胞后,75%酒精消毒瓶壁將T25瓶置于37℃培養箱放置約2-3h,若發現培養瓶破損、有液溢出及細胞有污染,請拍照后及時聯系我們。

      2)請在4或5X顯微鏡下確認細胞狀態,同時給剛收到的細胞拍照(10×,20×)各2-3張以及培養瓶外觀照片一張留存,作為售后時收到時細胞狀態的依據。

      3)貼壁細胞:細胞在37℃培養箱中放置2-3h,顯微鏡下觀察細胞的生長和貼壁情況,有些貼壁細胞在快遞運送過程中會因振動脫落和脫落后成團的情況。若鏡下觀察細胞的生長密度若在60%以下,可去除培養瓶中灌液培養基(若有未貼壁的細胞需要離心回收,重懸打入到原培養瓶中),加入新配制的完全培養基6-8mL,放到細胞培養箱中繼續培養。若細胞生長密度達70%-80%以上,可以對細胞進行傳代處理。傳代過程中,若因運輸振動脫落的細胞需要離心回收。

      4)備注:運輸用的培養基(灌液培養基)不能再用來培養細胞,請換用按照說明書細胞培養條件新配制的完全培養基來培養細胞。  收到細胞后**次傳代建議T25培養瓶1:2傳代 。      

      1、細胞培養條件及相關試劑的配制

      (1)培養條件: 氣相:空氣,100%。 溫度:37攝氏度,培養箱濕度為70%-80%。

      (2)準備L15培養基:上等胎牛血清,10%;雙抗,1% ,可添加5-Fu濃度為:400~10^65uM;

      注意:

      1. 細胞在傳代和剛復蘇時較為脆弱,中止液須為不含5-Fu的完全培養基,且在細胞未貼壁期間和貼壁前期需用不含5-Fu的完全培養基,待細胞生長狀態穩定時再根據需要濃度添加5-Fu。

      2.若細胞生長狀態較為緩慢時,可適當降低5-Fu的濃度,或使用不含5-Fu的完全培養基培養至細胞生長狀態較好時,再更換為所需的5-Fu濃度。

      (3)凍存液:90%血清,10%DMSO,現用現配。

      二.細胞處理:

      1) 凍存細胞的復蘇:

      將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入到含4-6mL完全培養基的離心管中混合均勻。在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,完全培養基重懸細胞。然后將細胞懸液加入含6-8ml完全培養基的培養瓶(或皿)中37℃培養過夜。**天顯微鏡下觀察細胞生長情況和細胞密度。

      2) 細胞傳代:如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳代培養。

      對于貼壁細胞傳代可以參考以下方法:

      1. 棄去培養上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。

      2. 加入0.25%(w / v)胰蛋白酶-0.53 mM EDTA于培養瓶中(T25瓶1-2mL,T75瓶2-3mL),置于37℃培養箱中消化1-2分鐘(難消化的細胞可以適當延長消化時間),然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養瓶后加入3-4ml含10%FBS的培養基來終止消化。

      注意:如還有部分細胞未消化下來,可采用分步消化:

      a. 準備一個無菌的15mL離心管,加入2mL含10%FBS的完全培養基;

      b.將消化下來的細胞吸入①中的離心管內中和(避免吹打);

      c.向之前消化的培養瓶中加入1mL 0.25%胰蛋白酶繼續消化2min左右,輕拍培養瓶,95%左右細胞脫落后加入2mL含10%FBS的完全培養基中和,中和后的細胞懸液移入①中的離心管內。 

      3.輕輕打勻后吸出,在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,補加1-2mL培養液后吹勻。將細胞懸液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8ml按照說明書要求配置的新的完全培養基以保持細胞的生長活力,后續傳代根據實際情況按1:2~1:5的比例進行。

      3)細胞凍存: 收到細胞后建議在培養前3代時凍存一批細胞種子以備后續實驗使用。

      下面T25瓶為例;

      1. 細胞凍存時按照細胞傳代的過程收集消化好的細胞到離心管中,可使用血球計數板計數,來決定細胞的凍存密度。一般細胞的推薦凍存密度為1×10^6~1×107個活細胞/ml ,細胞凍存建議每瓶T25凍一支。

      2. 1000rpm離心3-5min,去掉上清。用配制好的細胞凍存液重懸細胞 ,按每1ml凍存液含1×10^6~1×107個活細胞/ml分配到一個凍存管中將細胞分配到凍存管中,標注好名稱、代數、日期等信息。

      3. 將要凍存的細胞置于程序降溫盒中,-80度冰箱中過夜,之后轉入液氮容器中儲存。同時記錄好凍存管在液氮容器中的位置以便后續查閱和使用。

      注意事項

      1.收到細胞后,若發現干冰已揮發干凈、凍存管瓶蓋脫落、破損及細胞有污染,請立即與我們聯系。

      2.收到細胞先不開瓶蓋,瓶身擦拭酒精后放在培養箱靜置2-4小時(視細胞密度而定)穩定細胞狀態。接著在倒置顯微鏡下觀察細胞生長情況,并對細胞進行不同倍數拍照(建議收細胞時就整體外觀拍一張照片,觀察培養基的顏色和是否有漏液情況,隨后在顯微鏡下拍下細胞狀態,100*,200*各一張),觀察記錄細胞在運輸過程中是否有污染情況。作為我方進行銷售依據。

      3.由于細胞狀態受環境、操作和運輸等多方面因素影響,故本公司只保證客戶收到細胞后一周內的細胞狀態,故客戶需要售后時需出示收到細胞的時間證明及客戶提供收貨時間和發現問題后客服人員溝通的時間證明,期間間隔時間不能大于7天。

      4.所有動物細胞均視為有潛在的生物危害性,必須在二級生物**臺內操作,并請注意防護,所有廢液及接觸過此細胞的器皿需要滅菌后方能丟棄。

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